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oct包埋前沿信息_眼科oct一般多少钱做一次(2024年12月实时热点)

内容来源:材料耗材资讯网所属栏目:教程更新日期:2024-12-01

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冰冻切片冰晶和组织破碎的解决方法 冰冻切片在科研和病理诊断中的应用越来越广泛,但高质量的免疫组化染色效果受多种因素影响。许多人在做冰冻切片时经常遇到冰晶和组织破碎的问题,下面是一些解决方法: 快速冷冻保存:组织离体后应尽快进行冷冻保存,擦干表面血渍,避免PBS冲洗,包埋时尽量防止气泡产生。 使用专用包埋模具:使用专用的OCT包埋模具,避免组织不规则周边有突出部分,影响切片组织的完整性。 固定样品托:确保样品托牢固固定,避免切片时出现移动。 切片技巧:切片时要先慢后快,先慢是为了减小刀片的切力,使组织片不容易卷曲,后快是为了使所切的组织片远离刀片边缘,使得贴片容易。 多次切片:对于有特殊切面的样本,尽量一次性多切几张,每一次切片对组织都有损耗,反复冻融保存不当会影响后续组织形态。 防冰晶方法: 单纯OCT胶包埋法:将新鲜组织冰冻迅速置于包埋托上,再将组织的表面全部用进口OCT胶包后放入低温切片机内冷冻5分钟左右切片。 高渗透压脱水法:将固定过的组织取材后置于10%~30%的梯度蔗糖溶液中,置4℃冰箱过夜,待组织块沉底后,取出,用OCT胶包埋切片。 低温骤冷法:将组织块置入低温环境中,使组织骤然降温。本实验室采用的是液氨骤冷,即将新鲜取材的组织迅速置于液氨罐内10~30秒取出,OCT胶包埋后置于低温切片机内待其复温至-20℃左右即可切片。 通过以上方法,可以有效解决冰冻切片中冰晶和组织破碎的问题,提高免疫组化染色效果。

动物组织冰冻切片全攻略𐟧Š𐟔ꊱ. 𐟔„ 脱水步骤:将新鲜组织置于20%的蔗糖溶液中,待其沉底后转入30%的蔗糖溶液进行脱水。对于较大的组织,可以再次使用30%的蔗糖溶液进行脱水,确保脱水彻底。 𐟧Š 固定与包埋:将组织固定在固定液中48小时。如果需要进行特殊染色,可以直接用液氮速冻组织,然后使用OCT包埋剂进行包埋。 𐟔ꠥˆ‡片准备:将脱水后的组织用滤纸吸干表面水分,然后在包埋盒中滴入一些包埋剂。将组织切面朝下放入包埋盒,用OCT包埋剂覆盖完全,常温浸润约5分钟。将包埋盒放在冰冻切片的速冻台上速冻,待OCT变白变硬后即可进行切片。如果暂时不切片,可以保存在-20℃。 ✂️ 切片操作:将包埋块固定在切片机上,先进行粗切(25)修切平整后,开始切片,厚度为5-12。将干净的载玻片平放在切出的组织片上方,将组织贴于载玻片上,切片后保存在-20℃或-80℃。

如何正确取材和保存动物样本以供邮寄 动物组织样本的取材和保存对于后续的实验和检测至关重要。以下是详细的步骤和注意事项: 动物组织样本的取材 组织离体后应立即清洗并固定。常用的固定液有10%中性福尔马林或4%多聚甲醛,避免使用酒精。固定液的温度应保持在室温。 固定用的器皿应根据样本体积选择,固定液的体积应是样本体积的10-15倍。避免使用V型底、细长或小管固定。大组织标本应切开固定,以免中间部分自溶腐败。 冰冻切片标本必须新鲜,处理步骤为:组织离体后用OCT包埋,-80℃保存。送检过程中需有足够多的干冰或冰袋。 特殊组织需要使用特定的固定液,以避免样本发生变化,影响后续检测。 胃、肠道的内容物处理需特别注意:不能用挤的方式,以免破坏黏膜。可以用针打10%中性福尔马林或4%多聚甲醛到胃和盲肠里面去固定一会儿,半小时后切开用10%氯化钠溶液清洗,再固定。 对于皮肤、肺等轻质组织,可以选择在固定液上放沾湿的棉花团压住,避免组织漂浮在固定液上导致固定不充分。或者往肺组织的主支气管中灌固定液冲洗整个肺部,使肺部充盈后再放入固定液中送检。 动物组织样本的保存和邮寄 寄送前需确保样本已固定好,并按样本保存要求执行。 固定液固定的组织样本、组织蜡块、白片及其他非荧光染色玻片常温寄送。玻片在包装时需放入纸巾或气泡膜防震。 4℃保存的样本在寄送时选择冰袋运输,固定液切勿冷冻结冰。 荧光染色玻片送检时置于载玻片盒中低温避光送检,可放入纸巾或气泡膜防震,外面包一层锡纸避光,放足够冰块或干冰低温送检。 冰冻切片样本送检过程中必须有足够多干冰,选用保温泡沫箱进行包装。 送检的标本应具有物种、标本类型、标本离体时间、固定时间、固定类型、组织部位等信息,信息必须与送检纸质信息一致并清晰,并确定组织是否固定完全。如果难以判断,请与病理实验室工作人员联系咨询。 体积过小过薄的组织样本易丢失,不建议送检(如厚度<1mm的样本)。 取材中各器脏常规采集要求 取材前需进行动物麻醉、放血,避免组织内部血液太多,固定不充分。 动物死亡、组织离体后尽快(不可超过10分钟)固定或冻存,避免组织出现自溶。 通过以上步骤和注意事项,可以确保动物组织样本的正确取材和保存,为后续的实验和检测提供可靠的保障。

冰冻切片全攻略:从新手到高手 𐟧Š 实验材料 新鲜组织 H2O2 酒精 丙酮 PBS DAPI工作液 中性树胶 OCT 速冻架 恒冷箱切片机 烘箱 荧光显微镜 𐟔ꠥ–材 尽快采取新鲜材料,防止组织死后变化。 ❄️ 速冻 将组织块平放在软塑瓶盖或特制小盒内(直径约2cm)。 如果组织块小,可以适量加入OCT包埋剂浸没组织,然后将特制小盒缓缓平放入盛有液氮的小杯内。 当盒底部接触液氮时开始气化沸腾,此时保持小盒原位,不要浸入液氮中,大约10-20秒组织即迅速冰结成块。 制成冻块后,置入恒冷箱切片机进行冰冻切片。 如果需要保存,快速用铝箔或塑料薄膜封包,立即放入-80℃冰箱贮存备用。 𐟓Œ 固定 在样品托上涂一层OCT包埋胶,将速冻组织置于其上,4℃冰箱预冷5-10分钟让OCT胶浸透组织。 取下组织置于锡箔或玻片上,样品托速冻。 将组织置于样品托上,再添一层OCT胶,以完全覆盖为宜,速冻架(PE)上30分钟。 𐟔ꠥˆ‡片 使用恒温冰冻切片机,将其置于低温密闭室内,切片时不受外界温度和环境影响,可连续切薄片至5-10。 切片时,低温室内温度以-15℃ ~ -20℃为宜,温度过低组织易破碎,抗卷板的位置及角度要适当,载玻片附贴组织切片,切勿上下移动。 切好室温放置30分钟后,入4℃丙酮固定5-10分钟,烘箱干燥20分钟。PBS洗5分钟㗳次。 进行抗原热修复,微波热修复也可,室温自然冷却。可用3%H2O2孵育5-10分钟,消除内源性过氧化物酶的活性。 𐟌ˆ 免疫荧光染色 冰冻切片室温晾干15分钟,用含10%正常山羊血清的PBS室温封闭切片1小时。 滴加适当比例稀释的一抗或一抗工作液(可以均匀覆盖组织面,保证过程中不会使组织干涸)。 将切片放在加了PBS的免疫组化湿盒,室温孵育2小时或4℃过夜。 第二天先将湿盒放到37℃回温1小时,然后吸取片上的一抗进行回收,将切片插入到小染缸PBS冲洗。 滴加用PBS稀释好的二抗(避光)置于分子杂交箱中37℃孵育1小时。回收二抗,切片置于染缸内,PBS洗5分钟㗳次。 滴加DAPI工作液染核,室温10-20分钟(工作浓度0.1%染色15分钟)。 回收DAPI,滴加5-10抗荧光衰减封片剂或中性树胶,用处理干净的盖玻片封片,即可到荧光显微镜或共聚焦显微镜下观察拍照。 做好的切片放在切片盒内,置于4℃冰箱,可保存一周左右。

如何科学保存实验动物样品?一文搞定! 嘿,大家好!今天咱们来聊聊实验动物样品的保存和寄送问题。很多小伙伴在这方面可能有点摸不着头脑,别担心,我来帮你理清楚。 动物组织样本的保存 首先,咱们得知道,离体后的组织样本最好在20分钟内固定好,这样才能保证后续检测的准确性。送检的样本必须是固定好的,而且固定时间要超过两天。不同组织和不同的检测目的,固定的方法也不一样。 病理检测样本 组织样本 离体后要立刻固定,常用的固定液有10%中性福尔马林或4%多聚甲醛(尽量不要用酒精固定),室温保存就行。 固定的器皿要根据样本体积来选,组织固定液的体积应该是样本体积的10-15倍。避免用V型底、细长或小管的固定器皿。大组织标本要切开固定,防止中间部分自溶腐败。如果有特殊要求,可以根据实验要求选择其他处理方式。 如果是冰冻切片标本,必须新鲜处理。步骤是:组织离体后用OCT包埋,-80℃保存。送检过程中要有足够的干冰或冰袋。 特殊组织需要用特定的固定液,避免样本发生变化,影响后续检测。具体要求可以参考表格1。 胃、肠道的内容物处理要注意:不能用挤的方式,会破坏黏膜。可以用针打10%中性福尔马林或4%多聚甲醛到胃和盲肠里固定一会儿,半小时后切开用10%氯化钠溶液清洗,再固定。 对于皮肤、肺等比较轻、容易漂浮的组织:可以在固定液上放沾湿的棉花团压住,避免组织漂浮导致固定不充分。或者完整的肺组织离体后,往主支气管中灌固定液冲洗整个肺部,使肺部充盈,然后把充盈后的整肺放入固定液中送检。 细胞样本 贴壁细胞:细胞消化后离心,倒掉培养液保留细胞沉淀,用PBS洗一遍,离心倒掉液体保留细胞沉淀后加固定液(10%中性福尔马林或4%多聚甲醛)重悬,常温送检。 悬浮细胞:离心,倒掉培养液保留细胞沉淀,用PBS洗一遍,离心倒掉液体保留细胞沉淀后加固定液(10%中性福尔马林或4%多聚甲醛)重悬,常温送检。 希望这篇文章能帮到你们,实验顺利哦!如果有任何问题,欢迎留言讨论!𐟒쀀

病理实验样本保存与邮寄小贴士 𐟧갟šš 大家好,今天来聊聊一个让人头疼的问题:病理实验中样本的保存和邮寄。相信很多小伙伴都遇到过这样的情况,辛辛苦苦造好的动物模型,取材后因为保存不当,结果检测做不了,几个月的努力全都白费了。今天我就来给大家分享一些小技巧,希望能帮到大家,避免踩坑。 组织样本的保存 𐟧ꊦ𘅦𔗥Ž立即固定:取材后,组织离体清洗干净,然后立即用10%中性福尔马林或4%多聚甲醛固定。室温保存即可。 固定液的量要足够:固定用的器皿要根据样本体积来选择,组织固定液的体积应是样本体积的10-15倍。避免使用V型底、细长或小管固定,大组织标本要切开固定,以免中间部分自溶腐败。 冰冻切片样本的保存 ❄️ 新鲜取样:冰冻切片标本必须新鲜,处理步骤是组织离体后用OCT包埋,然后放入-80℃保存。送检过程中要有足够多的干冰或冰袋。 特殊组织的处理 𐟧ꊧ‰𙦮Š组织需要特定固定液:有些特殊组织需要用特定的固定液,避免样本发生变化,影响后续检测。具体要求可以参考相关图表。 胃、肠道内容物的处理:胃和肠道的内容物处理时要特别注意,不能用挤的方式,会破坏黏膜。可以用针注射10%中性福尔马林或4%多聚甲醛到胃和盲肠里固定一会儿,半小时后切开用10%氯化钠溶液清洗,然后再固定。 轻飘飘的组织:对于皮肤、肺等比较轻,容易漂浮在固定液上面的组织,可以在固定液上面放一个沾湿的棉花团压住,避免组织漂浮导致固定不充分。或者对于完整的肺组织,可以往主支气管中灌固定液冲洗整个肺部,使肺部充盈,然后把充盈后的整肺放入固定液中送检。 石蜡切片和冰冻切片的运输 𐟚š 石蜡切片:4%多聚甲醛(福尔马林)固定,冰袋运输。 冰冻切片:取样后直接-80℃保存,干冰运输。 透射电镜样本的保存 𐟔슩€射电镜:2.5%戊二醛固定,冰袋运输。 特殊样本:ROS(活性氧检测)需要新鲜样本。 希望这些小贴士能帮到大家,避免在实验中遇到不必要的麻烦。下次我们再来聊聊透射电镜和扫描电镜的取材及保存注意事项。祝大家实验顺利!𐟒ꀀ

轻松搞定大小鼠脑组织切片,上篇指南 ### 一、操作流程 𐟚€ 实验准备 首先,打开冰冻切片机的电源开关,启动样品头压缩机。然后,设置冰冻箱温度为22℃~-20℃,样品头温度为18℃~-21℃。确认手轮处于“锁住”状态,等待降温。 材料与试剂 脑组织 长方体模具 48孔板 铝箔纸 解剖镊 防卷板 切片刀 细毛笔 OCT包埋剂 封口膜 载玻片 PBS 二、脑组织处理 𐟧  模具制作 准备一张适当大小的铝箔纸,折叠成3层。 将铝箔纸沿着长方体模具的外周折叠,确保完全贴合并包裹住模具的五个面。 固定好铝箔纸的形状后,标注A(前部)、P(后部)以及脑组织的编号。标记完成后,小心地将长方体模具取出,得到一个棱角分明、底面平整的空心铝箔纸模具。 脑组织包埋 在蔗糖溶液中沉淀后的脑组织取出后,用无尘擦拭纸吸除表面液体,晾置片刻以确保表面完全干燥。 在成型的铝箔纸模具底部倒入少量OCT包埋剂,将脑组织腹侧向下平放入模具中,使大脑中缝平行于模具长边。 用解剖镊轻轻压实脑组织表面,使其沉入底部,随后添加OCT包埋剂至液面高于脑组织2~3mm。 三、脑组织切片 𐟔ꊥ†𐥆𛥈‡片机零件组装 将实验所需的细毛笔、切片刀、防卷板等工具放入切片机冰冻箱中预冷。 将包埋好的脑组织放入冰冻箱内的速冻区域,保持温度在-50℃,并让其快速冷冻约10分钟,直至OCT包埋剂完全凝固。 未完待续...

冰冻切片全攻略:从零开始到荧光显微镜观察 𐟧Š 实验材料准备 新鲜组织 H2O2 酒精 丙酮 PBS DAPI工作液 中性树胶 OCT 速冻架 恒冷箱切片机 烘箱 荧光显微镜 𐟔ꠥ–材 尽快获取新鲜组织,以防止死后变化。 ❄️ 速冻 将组织块放在软塑瓶盖或特制小盒内(直径约2cm)。 如果组织块小,可以加OCT包埋剂浸没,然后放入盛有液氮的小杯内。 当小盒底部接触液氮时,开始气化沸腾,保持原位约10-20秒,组织迅速冰结。 制成冻块后,放入恒冷箱切片机进行冰冻切片。 如果需要保存,用铝箔或塑料薄膜封包,立即放入-80℃冰箱。 𐟓Œ 固定 在样品托上涂一层OCT包埋胶,将速冻组织放在上面,4℃冰箱预冷5-10分钟。 取下组织,放在锡箔或玻片上,样品托速冻。 将组织放在样品托上,再加一层OCT胶,覆盖完全,速冻30分钟。 𐟔ꠥˆ‡片 使用恒温冰冻切片机,置于低温密闭室内,切片不受外界温度影响。 切片时,低温室内温度保持在-15℃ ~ -20℃,温度过低组织易破碎。 切片后,室温放置30分钟,入4℃丙酮固定5-10分钟,烘箱干燥20分钟。 用PBS洗5分钟,重复3次。 进行抗原热修复,微波热修复或室温自然冷却。 用3%H2O2孵育5-10分钟,消除内源性过氧化物酶活性。 𐟌ˆ 免疫荧光染色 冰冻切片室温晾干15分钟,用含10%正常山羊血清的PBS封闭1小时。 滴加适当比例稀释的一抗或一抗工作液,覆盖组织面。 将切片放在加了PBS的免疫组化湿盒,室温孵育2小时或4℃过夜。 第二天,将湿盒放到37℃回温1小时,回收一抗,切片放入小染缸PBS冲洗。 滴加用PBS稀释好的二抗(避光),置于分子杂交箱中37℃孵育1小时。 回收二抗,切片置于染缸内,PBS洗5分钟,重复3次。 滴加DAPI工作液染核,室温10-20分钟(工作浓度0.1%染色15分钟)。 回收DAPI,滴加5-10抗荧光衰减封片剂或中性树胶,用处理干净的盖玻片封片。 切片放在切片盒内,置于4℃冰箱,可保存一周左右。 希望这份详细的冰冻切片指南能帮助你顺利完成实验!𐟔좜耀

肌肉组织冰冻切片全攻略,实验党必看! 肌肉组织的冰冻切片主要用于保留组织的抗原性和形态结构,以便后续的切片和染色分析。以下是详细的操作步骤和注意事项: 前期准备 取材:选择中等受累的肌肉组织进行取材,避开肌电图的穿刺点。切取的肌肉组织大小一般为0.5cm㗰.5cm㗱cm左右。 固定:将切取的肌肉组织迅速放入适当的固定液中,如丙酮或特定的冷冻固定液,以防止组织自溶和腐败。 包埋步骤 速冻: 冷却异戊烷:将气泡较少的异戊烷倒入烧杯中,然后轻轻放入液氮中冷却,直至异戊烷完全冷却并产生白色结晶。 组织速冻:使用长柄枪镊子夹住固定好的肌肉组织,迅速放入低温异戊烷中,并向左右迅速而轻柔地晃动,确保组织均匀冷冻。 后续处理:在异戊烷中固定20~30秒后,移入-20℃冰箱中放置1小时,使组织周围的异戊烷挥发干净。然后,将冻结好的组织放入密封的塑料瓶中,置于-86℃以下的冰箱中保存。 OCT包埋 材料准备:准备好OCT包埋剂(一种用于冰冻切片的组织包埋剂)。 包埋操作:在冷冻切片机中,将少量OCT包埋剂滴加在样品托上,然后将速冻好的肌肉组织放置在OCT包埋剂上。使用镊子或冷冻切片机自带的工具轻轻按压,使OCT包埋剂完全包裹组织。 凝固:将包埋好的组织放入冷冻切片机中,等待OCT包埋剂凝固。凝固后,组织就被固定在OCT包埋剂中,可以进行后续的切片操作。 注意事项 操作环境:所有操作均需在低温环境中进行,以防止组织融化和损坏。 操作速度:速冻和包埋过程需要迅速进行,以减少冰晶的形成和对抗原性的破坏。 组织保护:在包埋过程中要确保组织不被挤压或损伤,以免影响后续的切片和染色效果。 设备要求:冰冻切片和包埋需要使用专门的冷冻切片机和包埋设备,以确保操作的准确性和可靠性。 后续处理 包埋好的肌肉组织可以存放在-86℃以下的冰箱中,待需要时进行切片和染色分析。切片后的组织可以进行苏木精-伊红染色、改良Gomorii染色、糖原过碘酸-Schiff(PAS)染色、油红O(ORO)染色以及免疫组化染色等多种染色方法,以观察组织的病理变化和抗原表达情况。 以上信息基于现有的医学文献和实际操作经验进行整理,具体操作可能因实验室条件和设备而有所不同。在实际操作中,应严格遵循实验室的SOP文件和操作规程进行。

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